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DNA电泳及应用技术找答案……基因操作中常用电泳有哪些？差别在哪里？影响凝胶电泳的因素有哪些？聚丙烯酰胺凝胶是怎么样构成的？电泳：是指带电粒子在电场中向与其自身带相反电荷的电极移动的现象。概述凝胶电泳：由琼脂、琼脂糖、淀粉胶及聚丙烯酰胺等物质作支持体的电泳。特点：1.可

以制成非常均匀的凝胶，带电质点在凝胶的孔中泳动。2.电泳操作方法简便，电泳速度快3.分辨率高，重复性好，电泳图谱清晰。4.适用于生化，免疫等定性定量测定琼脂糖凝胶天然琼脂（agar）:又名琼胶、菜燕、冻粉从石花菜及其它红藻类植物提取出来的一种线状高聚物。琼脂糖（agarose）琼脂胶（agar

opectin）琼脂糖半乳糖及其衍生物构成的中性物质，不带电荷可以形成具有刚性的滤孔，凝胶孔径的大小决定于琼脂糖的浓度。琼脂糖凝胶的特点（一）优点1.分离范围广，约200bp——50kb的核酸均可。3.凝胶结构均匀，孔径较大，可用来分离酶的复合物、核酸、病毒等大分子物质。4.透

明度较好，可直接或干燥成薄膜后进行染色。5.不吸收紫外光，可直接利用紫外光吸收法作定量测定6.有热可逆性（二）缺点1.机械强度差，易破碎，浓度不能太低。2.易被细菌污染，不易保存，临用前配制。3.琼脂糖支持层上的区带易于扩散，电泳后必须立即固定染色。4.与聚丙烯酰胺电泳相比，分辨率低。影响

核酸凝胶电泳的因素：1．样品核酸的性质2．电场强度和电场方向3．电泳环境：缓冲液的组成和离子强度直接影响迁移率4．凝胶孔径的大小。什么是迁移率带电颗粒在单位电场强度下的泳动速度影响因素有：1、DNA的分子大

小线状双链DNA分子在一定浓度琼脂糖凝胶中的迁移速率与DNA分子量对数成反比分子越大则所受阻力越大，也越难于在凝胶孔隙中蠕行，因而迁移得越慢。2、琼脂糖浓度DNA电泳迁移率的对数与凝胶浓度成线性关系。❖配制多大浓度的琼

脂糖凝胶，要根据被检的DNA分子大小来确定。琼脂糖凝胶浓度与线性DNA分辨范围3、DNA分子的构象相同分子量的线状、开环和超螺旋DNA在琼脂糖凝胶中移动速度超螺旋DNA最快,而开环双链DNA移动最慢。4、电源电压在低电压时,线状DNA

片段的迁移速率与所加电压成正比。随着电场强度的增加，片段越大,因场强升高引起的迁移率升高幅度也越大琼脂糖凝胶的有效分离范围将缩小。5、嵌入染料的存在荧光染料溴化乙啶（EB）用于检测琼脂糖凝胶中的DN

A,染料会嵌入到堆积的碱基对之间，使线状DNA迁移率降低15％。常用染料EB:溴化乙锭，能插入DNA分子碱基对之间，导致EB与DNA结合。DNA吸收的260nm的紫外光传递给EB，或者结合的EB本身在300和360吸收的射线，均可在可见光区以590波长发射出来，呈橙红

色。优点：染色操作简便，快速，室温下15-20min；不会使核酸断裂；灵敏度高，10ng或更少的DNA即可检出；可以加到样品中。EB是诱变剂，使用时一定要戴手套。EB废液要经过处理才能丢弃。SYBR:新型低毒，高灵敏度染料，加入样品中，价格较昂贵。Genefinder:新型低毒，高灵敏度

染料，加入样胶中，价格较低。6、离子强度影响电泳缓冲液的组成及其离子强度影响DNA的电泳迁移率。没有离子存在时(如误用蒸馏水配制凝胶),电导率最小,DNA几乎不移动在高离子强度的缓冲液中(如误加10×电泳缓冲液),严重时会引起凝胶熔化或DNA变性。常用的电泳缓冲液一般配制成浓

缩母液,储于4℃保存备用.实验步骤⑴1g琼脂糖加入100ml1×TAE电泳缓冲液中，摇匀。在微波炉中加热至琼脂糖完全溶解。（冷却到60℃，加入100μl的0.5mg/mlEB，并摇匀。）⑵用胶带将制胶板两端封好，插入适当梳子，

将溶解的琼脂糖（约50℃）倒入，室温冷却凝固。⑶充分凝固后撕掉两端的胶布，将凝胶置入电泳槽中，加1×TAE电泳缓冲液至液面覆盖凝胶1-2mm，小心垂直向上拔出梳子。⑷用移液器吸取总DNA或质粒样品4μl于封口膜上，再加入2μl的6X载样缓冲液，混匀后，小心加入点样孔

⑸打开电源开关，调节电压至3-5V/cm，可见到溴酚蓝条带由负极向正极移动，电泳约30min-60min。。⑹将凝胶放入EB染液中染色5-10min,用清水稍微漂洗。⑺将染色后的凝胶置于紫外透射检测仪上，盖上防护观察罩，打开紫外灯，可见到发出荧光的DNA条带。➢植物

总（核）DNA样品应呈现一条迁移率很小的整齐条带。琼脂糖凝胶电泳的实验技巧和方法1.）加样时枪头不要碰坏凝胶壁，否则DNA的带型将不会整齐，加样前要用枪头吸打凝胶孔中的溶液，以赶走样品空中的气泡。2.）每孔最大DNA上样量决定于DNA样品片段的大小、数目及样品孔形状与容量。3.

）应注意每孔最大上样容量及样品孔体积，以免加样时样品流入附近样品孔造成交叉污染，影响结果分析。4.）在实验加样中不一定每一个样品都换一个枪头，可在阳极槽中反复吸打电泳缓冲液以清洗。（对于需要回收DNA片段的电泳除外。）注意事项1.）凝胶中加入EB进行电泳，便于

紫外线下观察电泳状态，但EB会导致线形DNA迁移率下降。2.）判断正负极的另一方法是负极气泡（H2）比正极气泡（O2）多一倍。3.）电泳过程中，EB与DNA泳动的方向相反，长时间会造成靠正极方向的凝胶中E

B含量低，会对含量较少的小分子DNA片段检测困难。处理方法是：将凝胶在0.5ug/ml的EB溶液中染色30－45分钟。操作使用3mg的DNAMarkerDL2,000（500ng/条带）进行1%的琼脂糖凝胶电泳后，各DNA条带

自上至下分别为2kb，1Kb，750bp，500bp，250bp，100bp。二、聚丙烯酰胺凝胶电泳聚丙烯酰胺凝胶是三维网状结构的凝胶，其为支持物的电泳称为聚丙烯酰胺凝胶电泳(polyacrylamidegelelectro

phoresis，简称PAGE)。在成分：丙烯酰胺(简称Acr)和N,N-甲叉双丙烯酰胺(简称Bis)加速剂：N，N，N，N—四甲基乙二胺(简称TEMED)催化剂：过硫酸铵((NH4)2S2O8，

简称AP)或核黄素(即vitaminB2)的作用下聚合交联形成聚丙烯酰胺凝胶有下列特性：(1)在一定浓度时，凝胶透明，有弹性，机械性能好；(2)化学性能稳定，与被分离物不起化学反应，在很多溶剂中不溶；(3)对pH和温度变化较稳定；(4)几乎无吸附和电渗作用，只要Acr

纯度高，操作条件一致，则样品分离重复性好；(5)样品不易扩散，且用量少，其灵敏度可达10-6g(6)凝胶孔径可调节：通过改变Acr及Bis的浓度调节凝胶的孔径；(7)分辨率高：尤其在不连续凝胶电泳中较醋酸纤维薄膜电泳、琼脂糖电泳等有更高的分辨率。聚丙烯酰胺凝胶电

泳分为连续系统与不连续系统两大类。目前常用的多为圆盘电泳(如图1)和板状电泳(如图2)，两者电泳原理完全相同。图1聚丙烯酰胺凝胶圆盘电泳示意图(A为正面,B为剖面)(1)样品胶pH6.7(2)浓缩胶pH6.7(3)分离胶pH8.9(

4)电极缓冲液pH8.3图2夹心垂直板电泳槽示意图图3凝胶模示意图不连续体系由电极缓冲液、浓缩胶及分离胶所组成。浓缩胶是大孔胶，凝胶缓冲液为pH6.7的Tris-HC1。分离胶是小孔胶，凝胶缓冲液为pH8.9Tris-H

C1。电极缓冲液是pH8.3Tris-甘氨酸缓冲液。2种孔径的凝胶、2种缓冲体系、3种pH值使不连续体系形成了凝胶孔径、pH值、缓冲液离子成分的不连续性，这是样品浓缩的主要因素。图4电泳过程示意图A为电泳前3层凝胶排列顺序，3层胶中

均有快离子，慢离子B显示电泳开始后，蛋白质样品夹在快、慢离子之间被浓缩成极窄的区带。C显示蛋白质样品分离成数个区带。（二）影响凝胶聚合的因素1、试剂质量2、凝胶浓度3、温度和氧气的影响凝胶电泳的操作要点1凝胶制备2电极缓冲液3样品处理及加样4电泳5染色与

固定6脱色7分析实验步骤1.胶模固定：将两块洗净的玻璃板，按要求对齐，夹好。将胶模装入电泳槽固定好，并将胶模下端封好，防漏。(电泳槽按要求清洗干净)。2.制备分离胶：按分离胶配制方法配好分离胶，缓慢注入胶模中（占玻璃板的2/3），室温下聚合40min。3.制备浓

缩胶：配制好3%浓缩胶。将胶模4.中上层水倾倒出去，用滤纸5.吸干余水。倒入浓缩胶插好6.样品梳，注意避免汽泡出现。4.电泳：将胶模装好，去胶条后，装入电泳5.槽中，检查是否漏液后，倒入电泳缓6.冲液，胶模内侧的液面没过矮板但不7.可超过高板（矮板在内）。5

.上样：将样品梳拔出，用电极缓冲液冲洗样6.品孔。样品与样品缓冲液按一定比例7.混合好。用微量注射器加入加样孔，8.加样量为5～10μl。6.电泳:连接直流稳压电源，矮板连负极，打7.开电源开关。8.调节电流，进入分离胶之前为9.10mA，进入分离胶之后为2OmA。7.染

色:关闭电源，取下凝胶模。用剪刀、靠8.水流压力和润滑作用，将玻璃板与胶9.分开。10.在脱色摇床上用考马斯亮兰染色1h。8．脱色：将胶取出，蒸馏水冲洗数次后，放入脱色液中，数小时换液一次，直至背景清晰为止。烟曲霉菌中抗真菌活

性肽类物质的分离与纯化三、SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳（一）基本原理在聚丙烯酰胺凝胶中加入SDS（阴离子去污剂十二烷基硫酸钠），不影响凝胶的形成，不影响蛋白质的电泳迁移率，因蛋白质的电泳迁移率主要取决于其自身分子量的大小。SDS能打开蛋白质分子间的氢键和疏水键，使蛋白质变性

成为松散的线状。同时大多数蛋白质的每个氨基酸能与固定量的SDS相结合，形成SDS–蛋白质复合物。（二）SDS-聚丙烯酰胺凝胶胶体的制备（三）SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳的优缺点及应用SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳具有设备简单，样品用量甚微，操作方便等

优点，现已成为测定大多数蛋白质分子量的常用方法不连续凝胶电泳示意图